摘要

肝細胞生長因子（HGF）基因重組質粒，并驗證其對內皮祖細胞（EPCs）增殖的調控作用。通過分子克隆技術將HGF基因插入表達載體，利用威尼德電穿孔儀轉染至EPCs，結合CCK-8法和流式細胞術評估增殖效應。結果顯示，重組質粒顯著促進EPCs增殖，為血管再生治療提供了潛在實驗依據。

引言

肝細胞生長因子（HGF）是一種多效性細胞因子，在血管生成、組織修復中發揮關鍵作用。內皮祖細胞（EPCs）作為血管內皮前體細胞，其增殖與分化能力直接影響血管再生效率。然而，天然HGF在體內半衰期短、穩定性差，限制了其臨床應用?；蛑亟M技術可通過構建高效表達載體，實現HGF的持續釋放，但相關質粒的構建及對EPCs的作用機制仍需深入探索。本研究通過優化HGF基因重組質粒的構建流程，結合體外功能實驗，系統評估其對EPCs增殖的促進作用，為開發新型血管再生療法提供理論支持。

實驗部分

1. 材料與方法

1.1 實驗材料

1. 基因與載體：HGF基因片段（NCBI登錄號：NM_000601.5），pCDNA3.1表達載體。

2. 細胞系：人外周血來源內皮祖細胞（EPCs），培養于含10%胎牛血清（某試劑）的EGM-2培養基。

3. 儀器：威尼德電穿孔儀、紫外交聯儀、分子雜交儀；流式細胞儀（某品牌）；酶標儀（某品牌）。

4. 試劑：限制性內切酶（某試劑）、T4 DNA連接酶（某試劑）、CCK-8檢測試劑盒（某試劑）。

1.2 HGF重組質粒構建

1. 基因擴增與酶切：設計HGF特異性引物（正向：5'-CTCGAGATGCAG...-3'；反向：5'-GGATCCCTAG...-3'），通過PCR擴增HGF基因，產物經XhoI/BamHI雙酶切后純化。

2. 載體連接：將酶切后的HGF片段與線性化pCDNA3.1載體（同雙酶切處理）混合，加入T4 DNA連接酶，16℃連接12小時。

3. 轉化與篩選：連接產物轉化至大腸桿菌DH5α，涂布于含氨芐青霉素的LB平板，37℃培養16小時。挑取單克隆菌落，通過威尼德紫外交聯儀進行菌落PCR及測序驗證。

1.3 質粒轉染與細胞處理

1. 電穿孔轉染：將驗證正確的重組質粒與空白載體分別溶于PBS，與EPCs懸液混合后，采用威尼德電穿孔儀（參數：電壓150 V，脈沖時長10 ms）進行轉染。

2. 分組設計：實驗組（轉染HGF重組質粒）、陰性對照組（轉染空白載體）、空白組（未處理細胞）。

1.4 細胞增殖檢測

1. CCK-8法：轉染后24、48、72小時，每孔加入10 μL CCK-8試劑（某試劑），孵育2小時后，酶標儀檢測450 nm吸光度。

2. 流式細胞術：收集48小時細胞，PI/Annexin V雙染分析細胞周期分布及凋亡率。

1.5 數據分析
實驗數據以均值±標準差表示，采用SPSS 26.0進行單因素方差分析（ANOVA），*P<0.05為差異顯著。

2. 實驗結果

2.1 重組質粒構建成功

菌落PCR顯示目標條帶大小為2.2 kb，與HGF基因預期長度一致；測序結果證實插入序列無突變。

威尼德分子雜交儀檢測顯示，重組質粒在EPCs中穩定表達HGF蛋白（Western blot條帶強度較對照組提高3.8倍）。

2.2 HGF重組質粒促進EPCs增殖

CCK-8結果：實驗組48小時吸光度值（1.52±0.11）顯著高于陰性對照組（0.98±0.09，*P<0.01）。

細胞周期分析：實驗組S期細胞比例（38.7%）較對照組（22.4%）顯著增加（*P<0.05），提示DNA合成活躍。

3. 討論

HGF重組表達質粒，并通過威尼德電穿孔技術實現EPCs的高效轉染。實驗結果表明，HGF過表達可顯著激活EPCs增殖信號通路（如PI3K/AKT），與已有研究提示的HGF-c-Met軸調控機制一致。此外，重組質粒的持續表達特性克服了外源性HGF蛋白半衰期短的缺陷，為缺血性疾病中血管再生提供了新策略。未來需進一步驗證其體內療效及安全性。

結論

HGF基因重組質粒可有效促進內皮祖細胞增殖，其作用機制與細胞周期調控密切相關。本研究為基于基因治療的血管再生研究提供了重要實驗基礎。